技术文章您的位置:网站首页 >技术文章 >活体组织氧化应激活性氧(ROS)高质荧光测定试剂盒产品说明书(中文版)

活体组织氧化应激活性氧(ROS)高质荧光测定试剂盒产品说明书(中文版)

更新时间:2014-02-25   点击次数:1711次

YIJI 活体组织氧化应激活性氧(ROS)高质荧光测定试剂盒产品说明书(中文版)

主要用途

YIJI 活体组织氧化应激活性氧(ROS)高质荧光测定试剂是一种旨在通过透膜荧光染色剂氯甲基二氯

二氢荧光素二乙酯,在组织氧化损伤条件下,产生荧光,来定量检测组织内活性氧族的生成和增加的

而经典的技术方法。该技术由大师级科学家精心研制、成功实验证明的。适宜于活体动物组织的分析。可

以被用于细胞凋亡、信号传递、衰老、代谢和营养学等的研究。产品严格无菌,即到即用,操作简易,活

体检测,性能稳定。

技术背景

超氧自由基阴离子(superoxide radical;O2-)、*(hydrogen peroxide;H2O2)、羟自由基或氢氧基

(hydroxyl radical;OH-)、过氧化基(peroxyl radical;ROO-)、氢过氧自由基(hydroperoxyl;HOO)、烷

氧自由基(alcoxyl radical)、氮氧基(nitric Oxide;NO-)、过氧亚硝基阴离子(peroxynitrite anion;ONOO-)

次氯酸(hypochlorous acid;HOCl)、半醌自由基(semiquinone radical)、单线态氧气(singlet oxygen)等

细胞内活性氧族(Reactive Oxygen Species;ROS)的产生和增多,将导致细胞衰老或凋亡。氯甲基二氯二

氢荧光素二乙酯(6-chloromethyl-2',7'-dichlorodihydrofluorescein diacetate, acetyl ester;CM-H2DCFDA)是

取代二氯二氢荧光素二乙酯(2´,7´-dichlorodihydrofluorescin diacetate;DCFH-DA)的升级产品,一种*

自由通过细胞膜,并在细胞内长期滞留而不易外漏的染色剂。一旦被*、羟自由基或氢氧基、过氧

化基、次氯酸等氧化,便产生荧光。据此测定组织细胞内活性氧族的浓度。

产品内容

YIJI 清理液(Reagent A)

YIJI 染色液(Reagent B)

YIJI 稀释液(Reagent C)

产品说明书

毫升

微升

毫升

1份

保存方式

保存 YIJI 染色液(Reagent B)在-20℃冰箱里,严格避免光照;其余的保存在 4℃冰箱里,有效保

证6月

用户自备

50 毫升锥形离心管:用于组织收集的容器

15 毫升锥形离心管:用于工作液配制和组织处理的容器

1.5 毫升离心管:用于工作液配制的容器

6 孔细胞培养板:用于组织染色的容器

培养箱或恒温水槽:用于染色孵育

荧光显微镜:用于观察荧光组织

荧光分光光度仪:用于组织荧光定量检测

实验步骤

方法一:新鲜组织薄片定性检测

实验开始前,将-20℃冰箱里的试剂盒中的 YIJI 染色液(Reagent B)置入冰槽里融化,YIJI

稀释液(Reagent C)放进 37℃恒温水槽里预热。然后移出 xx 微升 YIJI 染色液(Reagent B)到新

的 15 毫升锥形离心管,加入 xx 毫升 YIJI 稀释液(Reagent C),混匀后,将 YIJI 染色工作液

置入暗室里。然后进行下列操作。

1. 手术取出动物组织

2. 放进预冷的 50 毫升锥形离心管

3. 加入 xx 毫升 YIJI 清理液(Reagent A)浸泡 15 秒

4. 用镊子取出组织,用无菌绵纸吸干

5. 即刻用刀片切离组织为 1cm X 1cm 大小的片状组织

6. 用镊子将组织薄片放进 6 孔培养板的一个孔

7. 加 xx 毫升含有 YIJI 染色液(Reagent B)和 YIJI 稀释液(Reagent C)的 YIJI 染色

工作液

8. 放进 37℃培养箱孵育 20 分钟,避免光照(注意:如果组织薄片较厚,可以增加孵育时间至 60 分钟)

9. 小心抽去 YIJI 染色工作液

10.加入 xx 毫升 YIJI 清理液(Reagent A)

11.用镊子将组织薄片放在载玻片上

12.压片

13.即刻在荧光显微镜下观察(定性检测):激发波长 490nm,散发波长 520nm――荧光增强,表明活性氧

族(ROS)含量高

方法二:组织匀浆定量检测

实验开始前,将-20℃冰箱里的试剂盒中的 YIJI 染色液(Reagent B)置入冰槽里融化,YIJI

稀释液(Reagent C)放进 37℃恒温水槽里预热。然后移出 xx 微升 YIJI 染色液(Reagent B)到新

的 1.5 毫升离心管,加入 xx 微升YIJI 稀释液(Reagent C),混匀后,将 YIJI 染色工作液置入

暗室里。然后进行下列操作。

1. 手术取出动物组织,并秤重以确定组织重量 100 毫克

2. 放进预冷的 50 毫升锥形离心管

3. 加 xx 毫升的 YIJI 清理液(Reagent A)

4. 用镊子取出组织,用无菌绵纸吸干

5. 即刻用刀片切碎组织

6. 放进一个预冷的 15 毫升锥形离心管

7. 加入 xx 毫升预冷的 YIJI 稀释液(Reagent C)

8. 涡旋震荡 5 秒,充分混匀

9. 即刻放入预冷的 YIJI 匀浆器

10.在冰槽里用研磨棒匀化组织(注意:切莫过度匀化)

11.将所有组织匀浆物移入 15 毫升锥形离心管

12.置入冰槽里备用

13.移取 5 微升组织匀浆物进行蛋白定量检测:建议使用 YIJI Bradford 蛋白质浓度定量试剂盒

(GMS30030.1)

14.移取 xx 微升组织匀浆物(样品:100 微克蛋白)或 xx 微升 YIJI 稀释液(Reagent C)(背景对

照)到 1 毫升比色杯里

15.加入 xx 微升升含有 YIJI 染色液(Reagent B)和 YIJI 稀释液(Reagent C)的 YIJI

染色工作液

16.上下倾倒混匀

17.放进 37℃恒温水槽孵育 20 分钟,避免光照

18.即刻放进荧光分光光度仪检测:激发波长 490nm,散发波长 520nm——(样品 RFU-对照 RFU)=实

际 RFU:增加,表明活性氧族(ROS)含量高

注意事项

1. 本产品为 20 次(组织匀浆)或 8 次(组织薄片)操作,包括背景对照

2. 建议使用新鲜组织,手术切除后 1 小时内的样品

3. 操作时,须戴手套

4. 系统检测,背景对照只需 1 次

5. YIJI 染色工作液配制后 1 小时内使用为佳

6. 孵育时,须避免光照

7. 如果组织薄片较厚,可以增加孵育时间至 60 分钟

8. 组织匀浆时,切莫过度

9. 建议组织染色完成后,即刻进行荧光定量或定性分析

10.本公司提供阳性对照甲萘醌溶液,观察组织荧光增强现象

11.本公司提供系列活性氧检测试剂产品

质量标准

1. 本产品经鉴定性能稳定

2. 本产品经鉴定荧光清晰